💡这项突破是什么?
清华新闻网9月30日电 近期，清华大学药学院尹航教授团队揭示了核cGAS在适应性免疫中的干扰素基因刺激蛋白（STING）非依赖性作用，建立了调控调节性T细胞（Treg）介导免疫耐受的cGAS-CTCF轴。在稳态下，环状GMP-AMP合成酶（cGAS）主要位于Treg细胞核内，而在初始CD4阳性T细胞（naïve CD4⁺ T）细胞受到刺激后，环状GMP-AMP合成酶（cGAS）的转录被激活并转位入核。通过T细胞和Treg特异性cGAS敲除小鼠实验，研究表明cGAS在胸腺阳性选择期间通过TNFRSF共刺激分子促进Treg分化，并稳定FOXP3表达。在细胞和动物层面，cGAS能够维持Treg的免疫抑制功能以及肿瘤免疫耐受。
在天然免疫细胞中，环状GMP-AMP合成酶（cGAS）是关键的胞质DNA传感器，能够识别微生物来源或异常的自身双链DNA（dsDNA）。cGAS被激活后可催化合成环状二核苷酸2'3'-cGAMP，该分子进一步结合并激活适配蛋白STING，从而启动TBK1-IRF3信号通路并诱导I型干扰素应答。有趣的是，cGAS在富含T细胞的淋巴组织中普遍表达。在CD8⁺T细胞中，cGAS可通过AKT依赖性机制维持中心记忆T细胞表型，从而增强抗肿瘤免疫。尽管CD4⁺T细胞也表达cGAS，但其DNA识别能力却主要依赖KU复合物，而非cGAS。这表明研究对cGAS在适应性免疫中，尤其是CD4⁺T细胞生物学中的功能仍缺乏完整理解。
首先，研究团队通过流式分析发现cGAS敲除鼠的胸腺和脾脏Treg数量和比例明显降低，且在与野生型骨髓的竞争性移植模型中也体现出类似的表型。进一步分析胸腺细胞亚群揭示阳性选择明显受损，而阴性选择不受影响。利用scRNA-seq结合TCR测序对Cd4CreCgasfl/fl与对照小鼠的CD4⁺CCR7⁺胸腺细胞进行转录组分析显示，这些细胞可分为13个亚群，其中调节性T细胞（Treg）前体特征性表达Tnfrsf9（4-1BB）、Tnfrsf4（OX40）及Tnfrsf18（GITR）。在cGAS缺失胸腺细胞中，FOXP3⁺Treg数量减少，成熟tTreg标志基因Nt5e（CD73）表达下降。同时，TCR信号强度报告基因Nr4a1的转录水平在Treg前体、preTreg及Treg中均显著减弱。TCR谱系分析进一步显示，cGAS缺失胸腺细胞的TCR克隆型复杂度下降，且cGAS缺失Treg群体中TCR克隆呈过度扩增，提示其多样性受损。综上，cGAS通过增强阳性选择中的TCR信号，维持tTreg分化与TCR库多样性。
图1.CD4⁺CCR7⁺胸腺细胞的单细胞RNA测序（scRNA-seq）和T细胞受体测序（TCR-seq）分析
在胸腺正选择过程中，tTreg前体依赖高强度TCR信号与CD28共刺激诱导c-Rel表达，从而上调OX-40、GITR等TNFRSF受体基因。单细胞转录组及流式分析提示，CD69⁺OX-40⁺胸腺细胞可作为DP阶段的早期tTreg前体标志。研究发现，cGAS缺失并不影响c-Rel及ThPOK、IRF4、Helios等转录因子表达，说明CD28信号仍完整；但CD69⁺OX-40⁺比例及OX-40表达在前体阶段即下降，后续CD25、NRP1、CD73等成熟标志物亦减少，关键的CTLA-4表达亦下调。胸腺选择过程中正向信号总量决定TCR亲和力阈值及库的形成，而肿瘤坏死因子受体超家族（TNFRSF） 信号竞争对高亲和力克隆偏倚具有决定性作用。研究团队发现，体内给予4-1BB（TNFRSF9）激动性抗体可显著增加CD25⁻FOXP3lo前体比例，并挽救cGAS缺失小鼠的缺陷，同时恢复其TCR Vβ5⁺克隆比例至野生型水平。这些结果表明，cGAS通过维持TNFRSF表达和信号强度，保障tTreg的有效选择和TCR库的稳态。
图2.T细胞cGAS条件性敲除tTreg的光谱流式分析
研究团队使用染色质可及性测序（ATAC-seq）揭示了CTCF是cGAS调控tTreg染色质可及性的关键协作因子，并证明了cGAS与CTCF存在内源性相互作用。通过in situ Hi-C和CTCF转录因子CUT&Run差异分析，研究发现cGAS维持了Treg基因组的染色质环结构，且对招募CTCF至Tnfrsf位点起到关键作用。
图3. 野生型和cGAS缺失tTreg的in situ Hi-C差异分析
研究团队通过体外抑制试验证明了Treg的抑制功能依赖于cGAS。在B16肿瘤模型中，Treg特异性缺失cGAS的小鼠（Foxp3C
